Arbeitsgruppe Dr. Weiste
Curriculum Vitae, Dr. Christoph Weiste
Dr. Christoph Weiste
Tel.: 0931-31-82455
E-mail: christoph.weiste(at)uni-wuerzburg.de
Curriculum Vitae:
Seit 2017 Junior Gruppenleiter am Lehrstuhl für Pharmazeutische Biologie,
Julius-von-Sachs Institut, Julius-Maximilians-Universität Würzburg
2019 PI in der Graduiertenschule für Lebenswissenschaften (GSLS),
Julius-Maximilians-Universität Würzburg
2018 Habilitand am Lehrstuhl für Pharmazeutische Biologie,
Julius-von-Sachs Institut, Julius-Maximilians-Universität Würzburg
2012-2016 Post-doktorand am Lehrstuhl für Pharmazeutische Biologie,
Julius-von-Sachs Institut, Julius-Maximilians-Universität Würzburg
2007-2011 Promotion (mit Auszeichnung) am Lehrstuhl für Allgemeine und
Entwicklungsphysiologie der Pflanze,
Albrecht-von-Haller Institut, Georg-August-Universität Göttingen
2001-2007 Studium der Biologie, Georg-August-Universität Göttingen
(Diplom mit Auszeichnung)
Gutachtertätigkeiten:
Trends in Plant Science, Plant Physiology, The Plant Journal, Plant Methods u.a.
Alexander-von-Humboldt Stiftung, Czech Science Foundation (GACR)
Forschungsschwerpunkt
Metabolische und Entwicklungsplastizität der Pflanze
Pflanzen zeigen eine enorme Stoffwechsel- und Entwicklungsplastizität in Abhängigkeit der Kohlenstoff- (C) und Stickstoff- (N) Ressourcen-Verfügbarkeit auf. In den letzten Jahren konnten wir die zentrale Rolle der evolutionär konservierten metabolischen Kinase SnRK1 und des nachgeschalteten Netzwerks der Gruppe C/S1 Basic Leucine Zipper (C/S1-bZIP) Transkriptionsfaktoren, bei der Integration der C/N-Versorgung in die Regulation des pflanzlichen Metabolismus und der Wachstumskontrolle aufzeigen.
Durch eine transkriptionelle Umprogrammierung des Aminosäure- und Kohlenhydratstoffwechsels, sowie durch die Steuerung der C- und N- Verteilung auf die Spross- und Wurzelmeristeme, ermöglicht dieses System eine metabolische Homöostase und eine Anpassung der Pflanzenarchitektur an die vorherrschenden Umweltbedingungen.
Diese genetisch determinierte Plastizität ermöglicht es Pflanzen, sich schnell an Änderungen in der Umwelt anzupassen als auch in ungünstige Lebensräume vorzudringen und trägt somit massgeblich zum evolutionären Erfolg von Pflanzen bei.
Publikationen
2024
Kreisz, P*, Hellens, A, Fröschel, C, Krischke, M, Maag, D, Feil, R, Wildenhain, T, Draken, J, Braune, G, Erdelitsch, L, Cecchino, L, Wagner, T, Müller, MJ, Becker, D, Lunn, JE, Hanson, J, Beveridge, C, Fichtner, F, Barbier, F, Weiste, C*, (2023) S1 basic leucine zipper transcription factors shape plant architecture by controlling C/N partitioning to apical and lateral organs. bioRxiv 2023.05.23.541964; doi: https://doi.org/10.1101/2023.05.23. 541964. Accepted in Proceedings of the National Academy of Sciences (PNAS) joint first* authorship.
2023
Hellens, A*, Kreisz, P, Humphreys, R, Feil, R, Lunn, JE, Dröge-Laser, W, Beveridge, C, Fichtner, F, Weiste, C*+, Barbier, F*+, (2023) The transcription factor bZIP11 acts antagonistically with trehalose 6-phosphate to inhibit shoot branching. bioRxiv 2023.05.23.542007; doi: https://doi.org/10.1101/2023.05.23.542007. joint first* and corresponding+ authorships.
Bortlik, J, Lühle, J, Alseekh, S, Weiste, C, Fernie, A, Dröge-Laser, W, Börnke, F, (2022), DUF581-9 (At2g44670; FLZ3) negatively regulates SnRK1 activity by interference with T-loop phosphorylation. bioRxiv 2022.03.17.484690; doi: https://doi.org/10.1101/2022.03.17 .484690. Accepted in Plant Physiology.
2022
Henninger, M, Pedrotti, L, Krischke, M, Draken, J, Wildenhain, T, Fekete, A, Rolland, F, Müller, MJ, Weiste, C, Dröge-Laser, W, (2022) The evolutionary conserved kinase SnRK1 orchestrates resource mobilization during Arabidopsis seedling establishment. The Plant Cell, 34(1):616-632.
2021
Barbier, F, Cao, D, Fichtner, F, Weiste, C, Garcia, MD, Caradeuc, M, Legourrierec, J, Sakr, S, Beveridge, C, (2021) HEXOKINASE1 signalling promotes shoot branching and interacts with cytokinin and strigolactone pathways. New Phytologist 231(3):1088-1104.
Muralidhara, P*, Weiste, C*+, Collani, S, Krischke, M, Kreisz, P, Draken, J, Feil, R, Mair, A, Teige, M, Müller, MJ, Schmid, M, Becker, D, Lunn, JE, Rolland, F, Hanson, J, Dröge-Laser, W+, (2021) Perturbations in plant energy homeostasis prime lateral root initiation via SnRK1-bZIP63-ARF19 signalling. Proceedings of the National Academy of Sciences (PNAS),118(37): e2106961118. joint first* and corresponding+ authorships.
2019
Fröschel, C, Iven, T, Walper, E, Bachmann, V, Weiste, C, Dröge-Laser, W (2019) A GAIN-of-Function Screen Reveals Redundant ERF Transcription Factors Providing Opportunities for Resistance Breeding Towards the Vascular Fungal Pathogen Verticillium longisporum. Molecular Plant Microbe Interactions 32(9):1095-1109.
2018
Dröge-Laser, W and Weiste, C (2018) The C/S1 bZIP Network: A Regulatory Hub Orchestrating Plant Energy Homeostasis. Trends in Plant Science, 23(5): 422-433.
Dröge-Laser, W, Snoek, BL, Snel, B, Weiste, C (2018) The Arabidopsis bZIP transcription factor family – an update. Current Opinion in Plant Biology, 45(Pt A):36-49.
Pedrotti, L*, Weiste, C*, Nägele, T, Wolf, E, Lorenzin, F, Dietrich, K, Mair, A, Weckwerth, W, Teige, M, Baena-González, E, Dröge-Laser, W (2018) Snf1-RELATED KINASE1-Controlled C/S1-bZIP Signalling Activates Alternative Mitochondrial Metabolic Pathways to Ensure Plant Survival in Extended Darkness. The Plant Cell, 30(2):495-509 *joint first-authors.
2017
Weiste, C, Pedrotti, L, Selvanayagam, J, Muralidhara, P, Fröschel, C, Novàk, O, Ljung, K, Hanson, J, Dröge-Laser, W (2017) The Arabidopsis bZIP11 Transcription Factor Links Low-energy Signalling to Auxin-mediated Control of Primary Root Growth. PLOS Genetics 13(2).
Wehner, N, Herfert, J, Dröge-Laser, W, Weiste, C (2017) High-Throughput Protoplast Trans-Activation (PTA) Screening to Define Transcription Factors in Auxin-Mediated Gene Regulation. Book chapter in Methods in Molecular Biology (Auxins and Cytokinins in Plant Biology) 1569:187-202.
2016
Walper, E, Weiste, C, Mueller, MJ, Hamberg, M, Dröge-Laser, W (2016) Screen Identifying Arabidopsis Transcription Factors Involved in the Response to 9-Lipoxygenase-Derived Oxylipins. PLOS One, 11(4).
2015
Hartmann, L, Pedrotti, L, Weiste, C, Fekete, A, Schierstaedt, J, Göttler, J, Kempa, S, Krischke, M, Dietrich, K, Mueller, MJ, Vicente-Carbajosa, J, Hanson, J, Dröge-Laser, W (2015) Crosstalk between Two bZIP Signaling Pathways Orchestrates Salt-Induced Metabolic Reprogramming in Arabidopsis Roots. The Plant Cell, 27(8):2244-2260.
Mair A, Pedrotti L, Wurzinger, B, Anrather D, Simeunovic A, Weiste, C, Valerio C, Dietrich K, Kirchler T, Nägele T, Vicente Carbajosa J, Hanson J, Baena-González E, Chaban C, Weckwerth W, Dröge-Laser W, Teige M (2015) SnRK1-triggered switch of bZIP63 dimerization mediates the low-energy response in plants. eLife doi 10.7554/eLife.05828.
Zhang, Y, Lee, C-W, Wehner, N, Imdahl, F, Svetlana, V, Weiste, C, Dröge-Laser, W, Deeken, R (2015) Regulation of Oncogene Expression in T-DNA-Transformed Host Plant Cells. PLOS Pathogens 11, e1004620.
2014
Weiste, C and Dröge-Laser, W (2014) The Arabidopsis transcription factor bZIP11 activates auxin-mediated transcription by recruiting the histone acetylation machinery. Nature Communications 5:3883.
2012
Berendzen, KW*, Weiste, C*, Wanke, D, Kilian, J, Harter, K, Dröge-Laser, W (2012) Bioinformatic cis-element analyses performed in Arabidopsis and rice disclose bZIP- and MYB related binding sites as potential AuxRE-coupling elements in auxin-mediated transcription. BMC Plant Biology 12:125. *joint first-authors
2011
Wehner, N, Weiste, C, Dröge-Laser, W (2011) Molecular screening tools to study Arabidopsis transcription factors. Frontiers in Plant Science 2:68.
Dietrich, K, Weltmeier, F, Ehlert, A, Weiste, C, Stahl, M, Harter, K, Dröge-Laser, W (2011) Heterodimers of the Arabidopsis transcription factors bZIP1 and bZIP53 reprogram amino acid metabolism during low energy stress. The Plant Cell, 23, 381-395.
2007
Weiste, C, Iven T, Fischer U, Oñate-Sánchez L, Dröge-Laser W (2007) In planta ORFeome analysis by large-scale over-expression of GATEWAY-compatible cDNA clones: screening of ERF transcription factors involved in abiotic stress defense. Plant Journal 52: 382–390.
